Книги
чёрным по белому
Главное меню
Главная О нас Добавить материал Поиск по сайту Карта книг Карта сайта
Книги
Археология Архитектура Бизнес Биология Ветеринария Военная промышленность География Геология Гороскоп Дизайн Журналы Инженерия Информационные ресурсы Искусство История Компьютерная литература Криптология Кулинария Культура Лингвистика Математика Медицина Менеджмент Металлургия Минералогия Музыка Научная литература Нумизматика Образование Охота Педагогика Политика Промышленные производства Психология Путеводители Религия Рыбалка Садоводство Саморазвитие Семиотика Социология Спорт Столярное дело Строительство Техника Туризм Фантастика Физика Футурология Химия Художественная литература Экология Экономика Электроника Энергетика Этика Юриспруденция
Новые книги
Янин В.Л. "Новгородские акты XII-XV Хронологический комментарий" (История)

Майринк Г. "Белый доминиканец " (Художественная литература)

Хусаинов А. "Голоса вещей. Альманах том 2" (Художественная литература)

Петров Г.И. "Отлучение Льва Толстого " (Художественная литература)

Хусаинов А. "Голоса вещей. Альманах том 1 " (Художественная литература)
Реклама

Микроскопическая техника - Роскин Г.И.

Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. Микроскопическая техника — М.: Советская наука, 1957. — 469 c.
Скачать (прямая ссылка): microskopicheskayatehnika1957.djvu
Предыдущая << 1 .. 7 8 9 10 11 12 < 13 > 14 15 16 17 18 19 .. 214 >> Следующая

34
заходить на покровное стекло. При этом лучше, чтобы капля жидкости под покровным стеклом не заполняла всего пространства, а была бы настолько мала, чтобы края покровного стекла оставались свободными. Можно ввести- под покровное стекло зеленые водоросли, которые выделяют кислород, необходимый для дыхания исследуемого объекта; при этом наблюдаемое животное длительное время остается живым.
Простейшие животные, образующие в культуре поверхностные пленки, берутся таким способом: покровное стекло кладут на некоторое время на пленку и затем снимают; при этом различные простейшие обычно прилипают к поверхности стекла.
Гораздо труднее исследовать живую клетку из ткани. Ее надо изолировать, причем всегда приходится считаться с нанесенными повреждениями. Задача исследователя — сделать эти повреждения возможно меньшими.
Проще всего проводить наблюдение живых растительных клеток, причем часто можно исследовать целиком маленькие листочки, корневые волоски или же можно снять неповрежденными пленки эпидермиса. Также относительно легко изучать тонкие животные покровы, как мезентерий, нлавникозые перепонки маленьких рыб и т. п. Все манипуляции надо производить в средах, соответствующих данному объекту (см. стр. 77). Объекты всегда должны быть влажными. Если наблюдение прерывается на короткое время, препарат кладут во «влажную камеру». Крупные клетки легко можно поместить под покровным стеклом. Если надо исследовать к,тетки массивного органа, то приходится либо делать срезы бритвенным ножом, либо же расщеплять кусочек ткаии в подходящей среде препаровальными иглами, по возможности под препаровальной лупой. Иногда можно получить изолированные клетки, соскабливая ножом поверхность увлажненного среза и ополаскивая клинок ножа в соответственной жидкой среде. Если эпителий нельзя снять,целым пластом, то эпителиальные клетки можно получить соскабливанием. Само собой разумеется, что при этом клетки иногда получают серьезные погтеждения. Хрящ можно резать бритвой (сначала снять чистой полотняной тряпочкой прилежащие ткани). При наблюдении растительных клеток следует отсосать из межклеточного пространства воздух водоструйного насоса.
Не всегда легко различить, жива ли еще клетка. В таких случаях лучше всего сравнивать ее с фиксированным препаратом; в растительных клетках контролируют способность их к плазмолизу. Во время пребывания растительной клетки в искусственной среде не должны появляться признаки плазмолиза; точно так же набухание или сморщивание животных клеток указывает на то, что среда уже не соответствует нормальным условиям.
Появление новых структур в плазме или ядре наблюдаемой клетки (например, зернистостей, ггитей и т. п.) может служить указанием на ее патологическое состояние. В некоторых случаях необходимо прибегнуть к прижизненному окрашиванию клетки \см.
з* 35
стр. 66) метиленовым синим: как правило, ядро и плазма окрашиваются диффузио только в клетках погибающих или погибших. Следует указать, что даже внутри висячей капли могут возникать изменения среды. Среду либо разбавляют бидистиллированной водой, либо дают испариться воде, если осмотическое давление среды понижается. Обычно pH (показатель концентрации водородных ионов) среды должен быть около 7.
Если под каким-либо соображениям в препарат надо добавить тушь, ее растирают в подходящей для объекта среде; точно так же растирают кармин после того, как ои предварительно был вымочен в бидистиллированной воде и затем высушен.
При изучении живых объектов под покровное стекло легко можно ввести новую жидкость; при этом к одной стороне покровного стекла прикладывают полоску промокательной бумаги, которая отсасывает из-под него жидкость, а с противоположной стороны пипеткой вводят новую среду: растворы красителей, реактивы и т. п. Эту смену среды можно еще ускорить, еслн покрьггь обрамляющей массой края покровного стекла, параллельные длинным краям предметного стекла.
Можно также исследовать мелкие организмы и изолированные клетки в «висячей капле». Для этого употребляют предметные стекла с круглым отшлифованным углублением. Взамен таких предметных стекол можно пользоваться обычными предметными стеклами, на которых при помощи канадского или пихтового бальзама укрепляют кольца, вырезанные нз стеклянных трубок. На покровное стеклышко наносится капля среды с находящимся в ней наблюдаемым объектом. Покровное стекло быстро переворачивают так, чтобы капля оказалась висящей снизу, и покровное стекло накладывают на углубление предметного стекла. Чтобы ие происходило запотевания стенок образовавшейся камеры, необходимо слегка увлажнить предметное стекло и прежде всего его углубление. Все эти манипуляции следует производить быстро, чтобы возможно меньше жидкости испарилось и не наступили изменения в среде. Этот метод наиболее подходит для тонких наблюдений над живыми объектами. Чтобы избежать испарения, нужно покровиое стекло окаймить вазелином.
Для исследования клеток нли маленьких живых объектов рекомендуется употреблять пластинки из сердцевины бузины толщиной в 20—40 ц, которые нарезают бритвой из хорошо высушенного куска и кладут в каплю изучаемой среды под покровное стекло. Эти пластинки насыщают красящими веществами, которые они медленно отдают объективам.
Предыдущая << 1 .. 7 8 9 10 11 12 < 13 > 14 15 16 17 18 19 .. 214 >> Следующая